Labor für Granulozytenimmunologie
Universitätsklinik für Transfusionsmedizin und ZelltherapieMedizinische Universität Wien
Universitätsklinik für Transfusionsmedizin und Zelltherapie
Labor für Granulozytenimmunologie
AKH Hauptgebäude 4i, Währinger Gürtel 18–20, 1090 Wien
Tel.: +43 (0)1 40400-75055
Fax: +43 (0)1 40400-53210
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Ao.Univ.-Prof. Dr. med. univ. Günther Körmöczi, MME
Stv. Klinikleitung, Stv. Curriculumsdirektor HumanmedizinMedizinische Universität Wien
Universitätsklinik für Transfusionsmedizin und Zelltherapie
Währinger Gürtel 18–20, 1090 Wien
Telefon: +43 (0)1 40400-53140
Pager (nur intern verfügbar): 81-6109
E-Mail: guenther.koermoeczi@meduniwien.ac.at
ORDIC-ID: 0000-0002-5490-9987
-
Leitung Erythrozytenlabor und Hämogenetik
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Leitung Granulozytenlabor
- Immunhämatologie
- Granulozytenimmunologie
- Hämogenetik
- Immunhämatologie
- Hämogenetik
- Allo- und Autoimmunisierung
- Granulozytenimmunologie
- Entzündungsmechanismen
- Transplantationsimmunologie
- Qualitätsmanagement
- universitäre Lehre
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Dr.in scient.med. Marlies Schönbacher, MSc
wissenschaftliche MitarbeiterinMedizinische Universität Wien
Universitätsklinik für Transfusionsmedizin und Zelltherapie
Währinger Gürtel 18–20, 1090 Wien
Telefon: +43 (0)1 40400-75055
Pager (nur intern verfügbar): 81-6193
E-Mail: marlies.schoenbacher@meduniwien.ac.at
- Bayat B, Lowack J, Audrain M, Croisille L, Curtis B, Dangerfield R, Esmaeili B, Grabowski C, Keller M, Kim H, Kroll H, Kvanka MM, Kwok J, Moritz E, Nathalang O, Nelson D, Nielsen KR, Pahn G, Poles A, Poreclijn L, Sachs UJ, Schönbacher M, Körmöczi GF, Kupatawintu P, Takahashi D, Uhrynowska M, Flesch B, Fung YL: World human neutrophil antigens investigation survey. Vox sanguinis 2023
- Schönbacher M, Banfi C, Berghold A, Matzhold EM, Wagner T, Mayr WR, Körmöczi GF: Immunoglobulin Class Profiles of ABO antibodies in Saliva and Serum of Healthy Individuals. Transfusion Medicine & Hemotherapy 2023; 50; 294-302
- Matzhold EM, Körmöczi GF, Banfi C, Schönbacher M, Drexler-Helmberg C, Steinmetz I, et al.: Lower Levels of ABO Anti-A and Anti-B of IgM, IgG and IgA Isotypes in the Serum but not the Saliva of COVID-19 Convalescents. Journal of Clinical Medicine 2022; 11: 4513.
- Schönbacher M, Körmöczi UM, Laccone F, Pickl W, Pelzl B, Körmöczi GF. Neonatal alloimmune neutropenia caused by maternal anti-FcγRIIIB antibodies. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 2021;48(suppl 1):40 (Poster-Abstract)
- Torreiter PP, Macher S, Matzhold EM, Resch B, Klaritsch P, Körmöczi GF, Polin H, Neuhold L, Schönbacher M, Schlenke P, Wagner T: Ethical issues and management of fetal hemolytic anemia caused by anti-Rh17 in a multipara with rare –D– phenotype. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 2021, 48(3): 183-187
- Schönbacher M, Aichinger N, Weidner L, Jungbauer C, Grabmer C, Schuha B, Rohde E, Mayr WR, Körmöczi GF: Leukocyte-Reactive Antibodies in Female Blood Donors: The Austrian Experience. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 2020. 48(2): 99-108
- Flesch BK, Reil A, Nogués N, Canals C, Bugert P, Schulze TJ, Huiskes E, Porcelijn L, Höglund P, Ratcliffe P, Schönbacher M, Kerchrom H, Kellershohn J, Bayat B: Multicenter Study on Differential Human Neutrophil Antigen 2 Expression and Underlying Molecular Mechanisms. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 2020. 47(5): 385-395.
- Matzhold EM, Wagner T, Drexler C, Schönbacher M, Körmöczi GF: Aberrant ABO B Phenotype with Irregular Anti-B Caused by a Para-Bombay FUT1 Mutation. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 2020;47(1): 94-97.
- Dauber EM, Mayr WR, Hustinx H, Schönbacher M, Budde H, Legler TJ, König M, Haas OA, Fritsch G, Körmöczi GF: Somatic mosaicisms of chromosome 1 at two different stages of ontogenetic development detected by Rh blood group discrepancies. Haematologica 2019;104(3): 632-638.
- Matzhold EM, Polin H, Körmöczi GF, Macher S, Schönbacher M, Wagner T: RHD del28Phe (DMW) encoded by a novel in-frame deletion resulting in reduced D antigen expression. Transfusion. 2019; 59(9): 3033-3034.
- Schönbacher M, Mayr WR, Schulze TJ, Leitner G, Schmidt C, Hofbauer G, Tolios A, Körmöczi GF: Time from venipuncture to cell isolation: Impact on granulocyte-reactive antibody testing. Clinical biochemistry. 2019;63: 72-78.
- Heinzl MW, Schönbacher M, Dauber EM, et al.: Detection of granulocyte-reactive antibodies: a comparison of different methods. Vox Sang 2015, 108: 287-293
- Schönbacher M, Heinzl MW, Dauber EM, et al.: Granulocyte-reactive antibodies are associated with red blood cell alloimmunization. Vox Sang 2014, 107: 200-203
Positionen und Funktionen
Seit 11/2011:
- Aufbau & technische Leitung des Granulozytenlabors
- Experimentelle Erythrozyten- und Granulozytenserologie
- Bearbeitung immunhämatologischer Spezialfälle
2008–2011: Zentrallabor im Krankenhaus der barmherzigen Brüder Wien
2006–2008: Research Associate bei Baxter Bioscience Wien
Berufsausbildung
- 2015-2022: Doctoral Programme for Applied Medical Sciences an der Medizinischen Universität Wien
- 2010–2012: Masterlehrgang Biomedizinische Analytik an der FH Campus Wien
- 2003–2006: Akademie für den med. techn. Laboratoriumsdienst des Landes Steiermark
Tätigkeiten (Forschung & Routine)
- 3/2022 Einreichung der Dissertation „Leukocyte-reactive antibodies in Austria female blood donors“ betreut von Ao. Univ.-Prof. Dr. Günther Körmöczi, MME
- Seit 04/2021 Durchflußzytometrische Bestimmung von ABO Antikörpern in Serum und Speichel
- 2017–2020 Screening von Blutspenderinnen auf granulozytenreaktive Antikörper
- Seit 2015 Charakterisierung wärmereaktiver antierythrozytärer Autoantikörper
- Seit 2013 Evaluierung neuer Methoden für den Einsatz in der Granulozytenimmunologie
- Seit 2012 Erforschung immunhämatologischer Spezialfälle hinsichtlich erythrozytärer (z.B. ABO, Rh D) bzw. granulozytärer (HNA) Merkmale
- 2011–2013 Etablierung granulozytenimmunologischer Methoden und Aufbau des Granulozytenlabors
- 2006–2008 Molekulare Wirkmechanismen des Makrophagen-Migrations-Inhibitions-Faktors (MIF) in der Sepsis
Preise
- 2015 Preis für Biomedizinische Analytikerinnen „für Verdienste im Bereich der Transfusionsmedizin“ von der österreichischen Gesellschaft für Blutgruppenserologie und Transfusionsmedizin (ÖGBT)
- 2013 Best Abstract Preis für „Prävalenz granulozytenreaktiver Antikörper bei alloexponierten Frauen“ von der österreichischen Gesellschaft für Blutgruppenserologie und Transfusionsmedizin (ÖGBT)
Labor für Granulozytenimmunologie
Das Labor für Granulozytenimmunologie beschäftigt sich mit der Bestimmung humaner Neutrophilenantigene (HNA) und dem Nachweis von Antikörpern, die gegen diese Antigene gerichtet sind, sowie mit wissenschaftlichen Projekten in diesem Bereich.
HNA-Antikörper können körpereigene Granulozyten angreifen und zur Ausbildung einer Autoimmunneutropenie (AIN) führen. Diese kommt sowohl bei Kleinkindern als auch bei Erwachsenen vor, im zweiten Fall oft begleitet von anderen immunologischen Erkrankungen bzw. in Verbindung mit einem Medikament (medikamentös induzierte Autoimmunneutropenie).
Alloantikörper, die gegen körperfremde Granulozyten gerichtet sind, können bei Neugeborenen eine neonatale Alloimmunneutropenie (NAIN) und – wenn sie z.B. in plasmahaltigen Blutprodukten enthalten sind – bei Transfusionsempfänger:innen eine transfusionsassoziierte akute Lungeninsuffizienz (TRALI) oder einen Refraktärzustand (z.B. nach Granulozytentransfusion) auslösen.
Klinische Fragestellungen und Laborleistungen
Klinische Fragestellungen
Verdacht auf Autoimmunneutropenie bei Kleinkindern (primäre AIN) sowie bei Erwachsenen als Begleiterscheinung bei anderen immunologischen Erkrankungen (sekundäre AIN).
Notwendiges Material für Analysen
- ca. 9 ml Serum oder Nativ-Blut (+ Clotingfaktor), mit oder ohne Trenngel,
bei Kindern je nach Alter Analyse mit ca. 3 ml möglich - ca. 1 ml EDTA-Blut
Durchgeführte Tests
- Mikroskopischer Granulozytenaggregationstest (GAT)
- Mikroskopischer Granulozytenimmunfluoreszenztest (GIFT)
- Durchflusszytometrischer white blood cell immunofluorescence test (WIFT)
- Enzymimmunoassay monoclonal antibody-specific immobilization of granulocyte antigens (MAIGA)
Weiterführende Tests bei Bedarf
Genotypisierung (SSP-PCR)
Durchführungsfrequenz ca. alle 2 Wochen
Befunddauer ca. 2 Wochen
Klinische Fragestellungen
Nicht-Ansprechen auf Transfusionen von Granulozytenkonzentraten auf Grund von Alloantikörpern im Patient:innenblut.
Notwendiges Material für Analysen
-
ca. 9 ml Serum oder Nativ-Blut (+ Clotingfaktor), mit oder ohne Trenngel,
bei Kindern je nach Alter Analyse mit ca. 3 ml möglich
Durchgeführte Tests
- Mikroskopischer Granulozytenaggregationstest (GAT)
- Mikroskopischer Granulozytenimmunfluoreszenztest (GIFT)
- Durchflusszytometrischer white blood cell immunofluorescence test (WIFT)
- Enzymimmunoassay monoclonal antibody-specific immobilization of granulocyte antigens (MAIGA)
Weiterführende Tests bei Bedarf (zur Verifizierung eines Alloantikörpers):
Genotypisierung (SSP-PCR)
Durchführungsfrequenz ca. alle 2 Wochen
Befunddauer ca. 2 Wochen
Klinische Fragestellungen
Mütterliche Alloantikörper, die gegen väterliche Granulozytenmerkmale gerichtet sind, können eine neonatale Alloimmunneutropenie (NAIN) des Kindes verursachen.
Notwendiges Material für Analysen
- Mutter: ca. 9 ml Serum oder Nativ-Blut (+ Clotingfaktor), mit oder ohne Trenngel
- Vater: ca. 12 ml frisches* EDTA-Blut
- Kind: ca. 1 ml EDTA-Blut
*frisches EDTA-Blut darf nicht äter als 24 Stunden sein und muss bis 10 Uhr vormittags (nach Terminabsprache) im Labor einlangen.
Durchgeführte Tests
- Mikroskopischer Granulozytenaggregationstest (GAT)
- Mikroskopischer Granulozytenimmunfluoreszenztest (GIFT)
- Durchflusszytometrischer white blood cell immunofluorescence test (WIFT)
- Enzymimmunoassay monoclonal antibody-specific immobilization of granulocyte antigens (MAIGA)
Weiterführende Tests bei Bedarf (zur Verifizierung eines Alloantikörpers):
Genotypisierung (SSP-PCR)
Durchführungsfrequenz bei Bedarf, nach telefonischer Terminabsprache
Befunddauer ca. 1 Woche
Klinische Fragestellungen
Alloantikörper in plasmahaltigen Blutprodukten können bei Transfusionsempfänger:innen eine Transfusionsassoziierte akute Lungeninsuffizienz (TRALI) auslösen. Bei einer TRALI-Abklärung ist eine separate HLA-Diagnostik erforderlich!
Notwendiges Material für Analysen
- Empfänger:in: ca. 9 ml Serum oder Nativ-Blut (+ Clotingfaktor), mit oder ohne Trenngel, sowie 12 ml frisches* EDTA-Blut
- Spender:in: ca. 9 ml Serum oder Nativ-Blut (+ Clotingfaktor), mit oder ohne Trenngel, sowie 2 ml EDTA-Blut
*frisches EDTA-Blut darf nicht älter als 24 Stunden sein und muss bis 10 Uhr vormittags (nach Terminabsprache) im Labor einlangen!
Durchgeführte Tests
- Mikroskopischer Granulozytenaggregationstest (GAT)
- Mikroskopischer Granulozytenimmunfluoreszenztest (GIFT)
- Durchflusszytometrischer white blood cell immunofluorescence test (WIFT)
- Enzymimmunoassay monoclonal antibody-specific immobilization of granulocyte antigens (MAIGA)
Weiterführende Tests bei Bedarf (zur Verifizierung eines Alloantikörpers):
Genotypisierung (SSP-PCR)
Durchführungsfrequenz bei Bedarf, nach telefonischer Terminabsprache
Befunddauer ca. 1 Woche